Меню Рубрики

Общий анализ крови алгоритм взятия

1. Оснащение:

стерильный скарификатор, укладка со стерильными капиллярами Панченкова (20 шт. в 1 упаковке), спирт 70 0 , планшет с пробирками, планшет для дозировки крови, капилляр Сали (0,02 мл.), резиновая груша, емкость с дезраствором, одноразовые (не стерильные) перчатки, халат, фартук, колпак, маска, пластиковые очки, вата, 2 предметных стерильных стекла (упаковка – 10 шт.), пробирки: № 1 на эритроциты – 4 мл – 3,5% раствор хлорида натрия, № 2 на гемоглобин – 5 мл трансформирующего раствора, № 3 на лейкоциты – 0,4 мл-3% раствора уксусной кислоты, 3 4 на СОЭ – 3,8% раствор стерильного оксилата натрия 0,025 мл.

2.Подготовка к процедуре:

1. забор крови у пациентов производится натощак;

2. приветствовать пациента, представиться;

3. объяснить пациенту цель и ход предстоящей процедуры и получить его согласие;

4. предложить пациенту удобно сесть;

5. вымыть и осушить руки, надеть перчатки;

6. обработать 4-ый (безымянный) палец пациента 70 0 спиртом;

7. левой рукой фиксировать палец пациента, а в правую руку взять скарификатор.

3.Выполнение манипуляции:

1. пунктировать на глубину 3-4 мм;

2. сухой стерильной ваткой снять первую каплю крови;

3. стерильным капилляром Панченко набираем 0,025 мл стерильного цитрата натрия, промывают его и сливают в пробирку с цитратом натрия;

4. этим же капилляром набирают полкапилляра крови и сливают в одну ячейку для дозирования, из которой набирают 0,02 мл крови капилляром Сали с грушей, снимают остатки крови с носика пипетки и выливают в пробирку № 1 (для эритроцитов);

5. из ячейки для дозирования берут 0,02 мл крови, выливают в пробирку № 2 (для гемоглобина);

6. 0,02 мл крови опускают в пробирку № 3 (для лейкоцитов);

7. 1 каплю крови капилляром Панченко опускают на предметное стекло и готовят тонкий мазок (под углом 45 0 специальным шлифовальным стеклом);

8. капилляр Панченко опускают в пробирку № 4 (на СОЭ);

9. обработать пациенту палец стерильной ватой, смоченной в спирте. Пациента отпускают.

4.Завершение процедуры:

1. мазок крови подписать, высушить на воздухе, поставить в штатив для фиксации. Упаковать в контейнер для транспортировки штатив с пробирками, с стеклами и штатив для дозировки крови.

2. В лаборатории:

а) подсчет эритроцитов в камере Горева;

б) измерение гемоглобина на ФЭКе;

в) подсчет лейкоцитов в камере Горева;

г) установка капилляра Паченкова в штатив Панченкова с кровью набранной до метки «0» на 1 час – определение СОЭ;

д) фиксация, окраска мазка крови и подсчет клеточных элементов (лейкоформулы) под микроскопом (иммерсия, увеличение 7*90)

3. Дезинфицирующий режим:

а) утилизация скарификатора на 1 час в 0,05% растворе анолита;

использованная вата и ветош – 1 час в 0,05 % растворе анолита;

остатки крови и реактивов с кровью – на 1 час в соотношении 5 6 1 с хлорной известью.

б) «0» – дезинфекция пробирок, капилляров, груш, штативов в 0,03% растворе анолита.

в) дезинфекция и предстерилизационная очистка совмещены – 90 минут в 0,03 % растворе анолита. Прополаскивание и стерилизация капилляров и стекол – в упаковке в биксе автоклавированием (1 час при 132 0 С, 1,2 атм.) Стекла кипятят в моющем растворе с перекисью водорода 1 час, сушат и стерилизуют автоклавированием.

Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав. Студалл.Орг (0.004 сек.)

источник

Цель: диагностическая — взятие крови на общий клинический анализ: определение количественного и качественного состава форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов), определение количества гемоглобина в крови и скорости оседания эритроцитов (СОЭ), определение содержания в крови глюкозы, а также свертываемости крови и времени кровотечения.

Показание: по назначению врача.

Места прокола кожи: мочка уха. безымянный палец, пятка ножки новорожденного.

Приготовьте: стерильные: копье-скарификатор, ватные шарики, перчатки, кожный антисептик, 5% раствор йода, КБСУ.

Алгоритм действия:

1. Медицинская сестра накануне исследования должна предупредить пациента о предстоящем заборе крови и разъяснить, что кровь берут натощак, до приема лекарственных средств, а на ужин не следует употреблять жирную пищу.

2. Усадите удобно пациента.

3. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком, наденьте перчатки.

4. Возьмите левой рукой IV палец левой руки пациента так, чтобы ваш первый палец располагался с тыльной поверхности кисти пациента, а остальные — с ладонной.

5. Обработайте место прокола двумя стерильными ватными шариками, смоченными кожным антисептиком и дайте ему высохнуть, иначе выступившая после прокола кровь растекается по пальцу.

6. Слегка сдавите ногтевую фалангу пальца пациента и держа копье- скарификатор перпендикулярно произведите прокол влево от срединной линии, немного отступя от ногтя.

7. Разрез должен располагаться поперек кожных линий пальца, ранка будет зиять, кровь из нее пойдет легко и обильно. Разрез, расположенный вдоль кожных линий, быстро спадает. Не следует делать прокол около самого ногтя, так как кровь затекает под него и набирать ее для исследования трудно,

8. Сотрите первую каплю крови стерильным сухим ватным шариком.

9. Для каждого исследования кровь набирают из новой капли.

10. После взятия крови место прокола обработайте 5% раствором йода.

11. Использованный инструментарий поместите в КБСУ.

— при ожогах и обморожениях кистей рук, у лиц с утолщенной и загрубевшей кожей на пальцах, кровь можно взять с мочки уха;

— у грудных детей кровь берут из большого пальца ноги или из пятки.

ЗАБОР КРОВИ ДЛЯ БИОХИМИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ ИЗ

Цель: диагностическая.

Показание: обследование пациента.

Осложнения: гематома, тромбофлебит, сепсис, вирусный гепатит, СПИД.

Место взятия крови: вены локтевого сгиба предплечья, кисти.

Приготовьте: стерильные: шприц однократного применения емкостью 10-20 мл. лоток, ватные шарики, салфетки, кожный антисептик, передник, маску, защитные очки, перчатки, пробирки с непромокаемыми пробками в штативе; резиновый жгут (венозную манжетку), клеенчатую подушечку, КБСУ.

Алгоритм действия:

1. Объясните пациенту цель и ход процедуры, получите согласие. Уточните, не

2. Напишите направление в лабораторию, пронумеруйте пробирку.

3. Помогите пациенту занять удобное положение.

4. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком (см. стандарт).

5. Наденьте перчатки (ем. стандарт), маску, защитные очки, передник.

6. Соберите шприц однократного применения (см. стандарт).

7. Подложите под локоть пациента клеенчатую подушечку.

8. Наложите резиновый жгут на среднюю треть плеча на салфетку или на нательное белье.

9. Завяжите жгут так, чтобы свободные концы были направлены вверх, а петля вниз.

10. Прощупайте пульс на лучевой артерии ( пульс должен быть сохранен).

11. Исследуйте вену. Найдите наиболее наполненную вену.

12. Попросите пациента несколько раз сжимать и разжимать кулак для наполнения вены, затем зажать его.

13. Обработайте перчатки кожным антисептиком.

14. Обработайте область локтевого сгиба, место инъекции последовательно двумя ватными шариками, смоченными в кожном антисептике. Третий ватный шарик держите в левой руке между IV и V пальцами.

15. Возьмите шприц в правую руку: II палец на канюле иглы, а III, IV пальцы

охватывают цилиндр сверху, I палец снизу.

16. Зафиксируйте вену ниже предполагаемого места прокола большим пальцем левой руки.

17. Снимите колпачок с иглы и пунктируйте вену, как обычно ( кулак пациента при этом сжат).

18. Потяните поршень на себя, убедитесь, что игла в вене.

19. Наберите в шприц 5-7 мл крови, левой рукой медленно оттягивая поршень на

20. Снимите жгут, кулак пациент должен разжать, быстрым движением извлеките иглу из вены.

21. Приложите ватный шарик с кожным антисептиком на место инъекции на 3-5 минуг, попросив пациента слегка согнуть руку в локтевом суставе.

22. Снимите иглу со шприца, поместите в КБСУ.

23. Выпустите кровь из шприца медленно без напора в пробирку по стенке, не допуская ее разбрызгивания.

24. Закройте пробирку непромокаемой пробкой.

25. Пробирку с кровью вместе со штативом поставьте в контейнер, плотно закройте его.

26. Помогите пациен ту вст ать или занять комфортное положение.

27. Убедитесь, что кровь не выделяется из места прокола вены, возьмите у пациента ватный шарик и поместите его в КБСУ.

28. Отправьте контейнер и направление в биохимическую лабораторию.

29. Снимите перчатки, поместите в КБСУ.

30. Вымойте и осушите руки.

забор крови из вены на биохимический анализ проводится утром натощак в количестве 10 мл;

забор крови.на ВИЧ и производят в любое время дня в количестве 5

— пробирка для забора крови должна быть сухой (иначе наступает гемолиз эритроцитов), химически чистой, иметь притертую резиновую пробку; запрещается проводить забор крови без шприца — только иглой (имеется опасность разбрызгивания крови);

— в направлении укажите номер пробирки, цель исследования. Ф И О, пол, возраст пациента, диагноз, отделение;

наличие безопасной системы забора крови вакутайнер (ВО УАСиГАІЫЕК) создает максимальную защиту медперсонала, обеспечивает качество забираемого материала

ЗАБОР ВЕНОЗНОЙ КРОВИ С ПОМОЩЬЮ ВАКУУМНОЙ

Вакуумная система забора крови — это безопасная система забора, транспортировки и качественного анализа образцов крови. Вакутайнер — полностью закрытая вакуумная пластиковая одноразовая система для взятия крови из вены.

Состоит из трех компонентов:

1. Двусторонней иглы с клапаном безопасности.

3. Стерильных пробирок с определенным объемом вакуума.

Преимущества: безопасность, эффективность, гарантия целостности образца и воспроизводимости исследования, минимум гемолиза, минимум микросгустков, время между забором образца и его контактом с добавкой постоянное; точность соотношения объемов кровь/добавка; минимальный эффект жгута, стерильность образца.

Цель: диагностическая.

Показание: обследование пациента.

Осложнения: гематома, тромбофлебит, сепсис.

Место взятия крови: вены локтевого сгиба, предплечья, кисти.

Приготовьте: стерильные: двустороннюю иглу с клапаном безопасности, одноразовый держатель, вакуумные пробирки, ватные шарики, перчатки, лоток, кожный антисептик, жгут (венозную манжетку), клеенчатую подушечку, маску, передник, защитные очки или экран, контейнер для транспортировки пробирок, КБСУ.

Алгоритм действия:

1. Объясните пациенту цель и ход процедуры, получите согласие. Уточните, не позавтракал ли пациент.

2. Напишите направление в лабораторию.

3. Помогите пациенту занять удобное положение.

4. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком.

5. Наденьте маску и перчатки, защитные очки, передник.

6. Возьмите систему для сбора крови.

7. Проверьте герметичность упаковки и срок годности основных компонентов забора крови.

9. Возьмите иглу, снимите защитный колпачок (при использовании 2-х сторонней иглы — снять серый защитный колпачок).

10. Вставьте иглу в иглодержатель, завинтите до упора.

11. Усадите или уложите пациента, освободив верхнюю конечность от одежды, подложив под локоть подушечку и опустив руку вниз.

12. Наложите венозную манжетку (жгут) на среднюю треть плеча на нательное белье или салфетку.

13. Прощупайте пульс на лучевой артерии (пульс должен быть сохранен).

14. Исследуйте вену. Найдите наиболее наполненную вену.

15. Попросите пациента несколько раз сжимать и разжимать кулак для наполнения вены, затем зажать его.

16. Обработайте кожным антисептиком перчатки.

17. Обработайте область локтевого сгиба, место инъекции последовательно двумя ватными шариками, смоченными кожным антисептиком, сбросьте в КБСУ. Третий ватный шарик держите в левой руке между IV и V пальцами.

18. Возьмите систему в правую руку.

19. Зафиксируйте вену ниже предполаг аемого места прокола большим пальцем левой руки.

20. Держите иглу и иглодержатель под углом 15° по отношению к руке пациента. і Введите иглу, продвигая ее по току крови на 1- 1,5 см.

21. Переложите иглодержатель в левую руку, а правой рукой вставьте пробирку в > иглодержатель до упора и обеспечьте поступление крови.

22. При поступлении крови в стерильную пробирку снимите жгут.

23. Извлеките из держателя пробирку с полученным образцом крови.

24. Перемешайте содержимое пробирки, переворачивая ее 8 — 10 раз, но невстряхивайте.

25. Вставьте в держатель следующую пробирку, при необходимости забора крови I на другие исследования.

26. Поставьте пробирку в контейнер для транспортировки крови.

27. Приложите стерильный ватный шарик к месту венепункции, извлеките иглу из г вены и снимите с иглодержателя.

28. Прижмите стерильный шарик к месту венепункции и предложите пациенту согнуть руку в локтевом суставе и подержать его 3-5 минут.

29. Промаркируйте пробирки.

30. Зарегистрируйте данные в журнале забора крови на исследование и отправьте

кровь в вакуумной пробирке в контейнере вместе с направлением в

31. Снимите средства защиты и поместите в КБСУ.

32. Вымойте и осушите руки.

Примечание: введение пробирки в иглодержатель до упора обеспечивает поступление крови, т.к. игла прокалывает резиновую мембрану и заглушку крышки пробирки. Кровь проходит в пробирку, пока не компенсирует созданный вакуум. Непоступление крови — показатель прокола вены насквозь, в этих случаях необходимо потянуть иглу (не извлекая) пока кровь не поступит в пробирку.

При извлечении пробирки из иглодержателя резиновая мембрана приходит в Исходное положение, перекрывает ток крови по игле. При необходимости используют различные пробирки в зависимости от назначенных врачом тестов.

Читайте также:  Сдача крови на анализ сахара

Последнее изменение этой страницы: 2016-04-19; Нарушение авторского права страницы

источник

Взятие крови для общего клинического анализа крови производят путем укола в мякоть IV пальца левой руки или мочку уха. Для укола палец обрабатывают ватным шариком, смоченным раствором антисептики, чаще всего септоцида. Укол лучше производить сбоку, где более густая капиллярная сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от толщины кожи. Кровь из ранки должна вытекать свободно, так как при сильном надавливании на палец возможно примешивание тканевой жидкости, приводящее к искажению результатов.

Не рекомендуется брать кровь сразу после физической и умственной нагрузки, приема медикаментов, физиотерапевтических процедур, диагностических манипуляций. Необходимо производить забор крови натощак. Повторные исследования желательно проводить в одни и те же часы, поскольку морфологический состав крови подвержен колебаниям на протяжении суток.

Для исследования гемограммы используют пробирочный метод взятия крови. Точная дозировка крови и разводящих жидкостей достигается с помощью калиброванных пипеток и дозаторов.

Общий клинический анализ крови включает определение следующих компонентов:

3) индексы красной крови (цветовой показатель и среднее содержание гемоглобина в одном эритроците);

4) скорость оседания эритроцитов (СОЭ);

6) осмотическая резистентность эритроцитов и их диаметр;

7) количество ретикулоцитов;

8) количество лейкоцитов и лейкоцитарная формула;

2. Методика определения концентрации гемоглобина, количества эритроцитов и ретикулоцитов. Расчет индексов красной крови: цветовой показатель и среднее содержание гемоглобина в одном эритроците. Диагностическое значение. Гематокритное число.

Предложено много методов определения концентрации гемоглобина. Важнейшие из этих методов – колориметрические. Чаще колориметрируют цветные производные гемоглобина: хлорид гематина, цианметгемоглобин, карбоксигемоглобин и др. Концентрацию гемоглобина измеряют фотоэлектроколориметрами, приборами ГФ-2 и ГФ-3, гемоглобинометрами при автоанализаторах.

Унифицированным является цианметгемоглобиновый фотометрический метод. Он основан на превращении гемоглобина в цианметгемоглобин при добавлении к крови реактива (раствора Драбкина), содержащего железосинеродистый калий и цианид калия. Концентрацию цианметгемоглобина измеряют фотометрически, а расчет количества гемоглобина производят по калибровочному графику.

Гематиновый метод Сали основан на превращении гемоглобина при добавлении к крови хлористоводородной кислоты в хлорид гематина (хлоргемин) коричневого цвета, интенсивность окраски которого пропорциональна содержанию гемоглобина. В настоящее время этот метод не имеет широкого применения.

В норме концентрации гемоглобина составляет:

Увеличение концентрации гемоглобина наблюдается у людей, живущих в условиях высокогорья, при обезвоживании у работников горячих цехов, после обильной рвоты и при диарее, при массивных ожогах, при эритремии и др.

Уменьшение концентрации гемоглобина наблюдается при анемиях, а так же при обильном употреблении жидкости, гемодилюции лекарственными инфузионными средствами и др.

Определение количества эритроцитов крови выполняется следующими методами:

1. Подсчет эритроцитов в счетной камере с сеткой Горяева.

Принцип метода: в строго определенном объеме каме­ры подсчитывают под микроскопом клеточные элементы, а затем производят перерасчет полученного результата на 1 мкл крови. С целью уменьшения количества клеток, подлежащих подсчету, кровь предварительно разводят в смесителях или пробирках.

1) смесители (меланжеры) или пробирки для разведе­ния крови;

2) 3 % раствор хлорида натрия или жидкость Гайема для разведения эритроцитов (ртути хлорид — 0,5 г; натрия сульфат — 5,0 г; натрия хлорид — 1,0 г; вода дистиллиро­ванная — до 200 мл);

Смесители представляют собой капиллярную пипетку с резервуаром, содержащим бусинку, способствующую смешиванию крови с жидкостью для разведения. На сме­сителе нанесены метки: одна — 0,5, другая — перед входом в резервуар — 1,0, третья — у выхода из ампулы — 101. При набирании крови в пипетку до метки 0,5 она будет разве­дена в 200 раз, до 1,0 — в 100 раз.

Счетная камера представляет собой стеклянную плас­тинку с выгравированной или наклеенной сеткой Горяе­ва. Обычно на одной пластинке имеются две сетки, разде­ленные между собой глубокой канавкой, что позволяет ис­пользовать одну сетку для подсчета эритроцитов, а другую — для подсчета лейкоцитов. По краям сеток находятся воз­вышения, к ним притираются покровные стекла, которые образуют верхнюю границу камеры. Притирать покров­ные стекла нужно очень плотно до появления радужных колец (так называемых колец Ньютона), ибо только в этом случае будут соблюдены необходимые высота (1/10 мм) и объем счетной камеры. Сетка Горяева имеет 225 больших квадратов (15 х15), 25 из которых раз­делены на малые, по 16 в каждом. Каждая сторона малого квадрата равна 1/20 мм, а так как высота камеры состав­ляет 0,1 мм, то объем счетной камеры, ограниченной од­ним малым квадратом, будет равен 1/4000 мм 3 .

Ход исследования: в сухую чистую пробирку или сме­ситель отмеривают раствор хлорида натрия или жидкость Гайема. Пипеткой от гемометра Сали набирают кровь из пальца, вытирают кончик пипетки марлей или фильтро­вальной бумагой, выдувают кровь на дно пробирки с жидкостью для разведения. Подготавливают камеру Горяева. Затем концом круглой стеклянной палочки или пастеровской пипеткой наносят каплю разведенной кро­ви на среднюю пластинку камеры у края покровного стекла.

Интерпретация полученных данных. Подсчет эрит­роцитов производят спустя 1-2 мин после заполнения ка­меры (когда эритроциты осядут на дно камеры) при малом увеличении микроскопа (объектив 8х, окуляр — 10х или 15х) и при затемненном поле зрения (при опущенном кон­денсоре или прикрытой диафрагме). Считать эритроциты необходимо в 5 больших квадратах, т. е. в 80 маленьких, расположенных по диагонали. Подсчету подлежат все эритроциты, лежащие внутри малого квадрата, и те, кото­рые находятся на левой и верхней линиях. Эритроциты, расположенные на правой и нижней линиях, не считают, так как они будут учтены в следующем квадрате.

Количество эритроцитов в 1 мкл (мм 3 ) крови высчиты­вают по следующей формуле:

где X — количество форменных элементов в 1 мкл крови; А — количество форменных элементов, сосчитанных в опреде­ленном количестве малых квадратов (для эритроцитов — в 80); Б — количество сосчитанных малых квадратов (80); В — степень разведения крови (для подсчета эритроцитов -100 или 200); 4000 — величина, умножая на которую, мы получаем количество клеток в 1 мкл (1 мм 3 ), так как объ­ем 1 маленького квадрата равен 1/4000 мм.

Для перевода в систему СИ (пересчет на 1 л крови) по­лученную цифру умножают на 10 6 (или количество целых единиц умножают на 10 12 ).

Методика подсчета эритроцитов в счетной камере дос­таточно точна (ошибка может достигать 2,5 %), но весьма трудоемка. Ошибки могут быть обусловлены: образовани­ем сгустка, недостаточным количеством подсчитанных квадратов, несоблюдением условий, обеспечивающих правильную высоту счетной камеры (притирание покров­ных стекол без образования радужных колец), неравно­мерным заполнением камеры (образование пузырьков воздуха), подсчетом эритроцитов без выжидания 1-2 мин (эритроциты не успевают осесть и результат оказывается заниженным), плохо вымытыми смесителем и счетной ка­мерой, недостаточной квалификацией лаборанта, выпол­няющего исследование.

2. Фотометрический метод подсчета количества эритроцитов – основан на фотометрическом измерении степени погашения света определенных длин волн взвесью эритроцитов. Процент задержанного света прямо пропорционален числу эритроцитов. Для этого используют приборы типа эритрогемометров и электрофотоколориметры.

3. Электронно-автоматический метод. Используются приборы автоматического счета частиц крови, работающие по импульсному и сцинтиляционному принципу (счетчики «Целлоскоп» и «Культер», автоанализаторы «Техникон»).

Нормальное количество эритроцитов:

— у женщин 3.7 – 4.7 х 10 12 /л;

— у мужчин 3,9 — 5,1 х 10 12 /л.

Увеличение количества эритроцитов наблюдается:

1) при эритремии (абсолютный первичный эритроцитоз);

2) при гипоксии: обструктивная вентиляционная недостаточность, при наличии альвеолярно-капиллярного блока – фиброзирующий альвеолит и легочные васкулиты, врожденные пороки сердца с шунтом справа налево и др;

3) при гемоглобинопатиях (наследственные заболевания, характеризующиеся наличием в эритроцитах аномальных гемоглобинов);

4) при вторичных абсолютных эритроцитозах, связанных с повышенной продукцией эритропоэтинов (рак почек, гидронефроз и поликистоз почек, рак печени и др.);

5) при вторичных абсолютных эритроцитозах, связанных с избытком адренокортикостероидов или андрогенов (феохромоцитома, синдром и болезнь Иценко-Кушинга, гиперальдостеронизм);

6) при относительных эритроцитозах вследствие обезвоживания, стрессов, алкоголизма, повышенной физической нагрузки, проживания в условиях высокогорья и др.

Уменьшение количества эритроцитов характерно для анемий различного происхождения. От истинной анемии, характеризующейся абсолютным уменьшением эритроцитарной массы, нужно отличать анемию (эритроцитопению) вследствие гидремии (снижение гематокрита из-за увеличения объема плазмы).

Уменьшение количества эритроцитов (анемия, эритроцитопения) наблюдается при постгеморрагических анемиях, анемиях вследствие недостаточного кровеобразования (железодефицитная, витамин-В12- и фолиеводефицитная), анемиях в результате усиленного распада эритроцитов (гемолитические), железоперераспределительных и метапластические (при опухолевых заболеваниях крови) анемиях и др.

Расчет индексов красной крови: цветовой показатель и среднее содержание гемоглобина в одном эритроците.

Под индексами красной крови понимают среднее содержание гемоглобина в одном эритроците и цветовой показатель.

Определение среднего содержания гемоглобина в одном эритроците производят делением концентрации гемоглобина на число эритроцитов в одинаковом объеме крови. В норме 1 эритроцит содержит 33 пг гемоглобина (допустимые колебания 27-34 пг).

Величину 33 пг условно принимают за единицу (норма содержания гемоглобина в одном эритроците) и обозначают как цветовой показатель.

Цветовой показатель отражает насыщение эритроцита гемоглобином.

Вычисление цветового показателя (ЦП) производят по формуле:

три первые цифры числа эритроцитов (в миллионах)

две первые цифры числа эритроцитов (в миллионах)

ГЕМОГЛОБИН (в условных единицах)

две первые цифры числа эритроцитов (в миллионах)

В норме цветовой показатель равен 0,85 – 1,05.

Индексы красной крови важны для суждения о нормо-, гипер-, гипохромии эритроцитов.

Гиперхромия – увеличение среднего содержания гемоглобина в 1 эритроците, дающее цветовой показатель выше 1.05, зависит исключительно от увеличения объема эритроцитов, а не от повышенного насыщения их гемоглобином, так как нормальный эритроцит насыщен гемоглобином до предела. Гиперхромия характерна для мегалобластных анемий, обусловленных дефицитом витамина В12 и фолиевой кислоты.

Гипохромия – уменьшение среднего содержания гемоглобина в 1 эритроците, дающее ЦП ниже 0.85, может быть так же следствием уменьшения объема эритроцитов. Гипохромия служит истинным показателем или дефицита железа в организме, или железорефрактерности. Гипохромия наблюдается при хронических кровопотерях, железодефицитных и железорефрактерных анемиях, свинцовой интоксикации и др.

Нормохромия – это нормальное содержание гемоглобина в эритроците (ЦП -0,85-1,05). Нормохромные анемии развиваются при равномерном уменьшении содержания эритроцитов и количества гемоглобина и наблюдается в случаях острых кровопотерь, при гипопластической анемии, при гемолизе.

Гематокрит (гематокритное число) – дает представление о соотношении между объемом плазмы и объемом форменных элементов крови. Определяется с помощью следующих методов.

1. Метод центрифугирования в гематокритной трубке.

2. Электронно-автоматический метод (с помощью аппаратов «Целлоскоп» и «Культер»).

Нормальные величины гематокрита:

Гематокритное число учитывается при диагностике полицитемических и олигоцитемических состояний.

Ретикулоциты – это молодые эритроциты, содержащие базофильную субстанцию в виде сеточки, представленную агрегированными рибосомами и митохондриями. Сеточка обнаруживается при прижизненной окраске мазков крови 1% раствором бриллианткрезил синего. Подсчет производится под иммерсионным объективом по отношению к 1000 эритроцитов.

В норме содержание ретикулоцитов в периферической крови составляет 2-10º/○○ (0,2-1,2%). Ретикулоцитоз отображает степень регенераторной способности костного мозга. При гемолизе, кровопотерях эритропоэз в нормальном костном мозге активизируется, и число ретикулоцитов в нем и в периферической крови возрастает. Отсутствие роста ретикулоцитов в выше указанных ситуациях свидетельствуют о пониженной функции костного мозга.

Ретикулоцитоз при отсутствии анемии говорит о скрытых, но хорошо компенсированных потерях крови. Высокий ретикулоцитоз наблюдается при адекватном лечении витамин-В12-дефицитной анемии.

3. Методика определения осмотической резистентности эритроцитов и диаметра эритроцитов. Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ). Диагностическое значение.

Резистентность – свойство эритроцитов противостоять разрушительным воздействиям: тепловым, осмотическим, механическим и др. В клинике наибольшее значение приобрело определение осмотической резистентности.

Принцип метода состоит в том, что эритроциты в гипертонических солевых растворах сморщиваются, а в гипотонических – набухают. При значительном набухании наступает гемолиз.

В пробирках готовят растворы хлорида натрия различной концентрации (от 0.70 до 0.22%), затем вносят в них один и тот же объем крови (0.02 мл) и оставляют на час при комнатной температуре. Через час пробирки центрифугируют и определяют начало гемолиза по легкому порозовению раствора и полный гемолиз – по интенсивной красно-лаковой окраске раствора.

В норме минимальная резистентность у взрослых людей колеблется между 0,48% и 0,46% хлорида натрия, максимальная – между 0,34% и 0,32% хлорида натрия.

Снижение осмотической резистентности эритроцитов наблюдается при наследственном микросфероцитозе (болезнь Минковского-Шоффара), аутоиммунных гемолитических анемиях. Повышение осмотической резистентности эритроцитов встречается при наследственных гемолитических анемиях, связанных с дефицитом глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы, при некоторых гемоглобинопатиях (талассемия).

Измерение диаметра эритроцитов и графическую регистрацию распределения эритроцитов по величине (эритроцитометрическая кривая Прайс-Джонса) производят с помощью прямых микроскопических и электронно-автоматических методов.

Прямой микроскопический метод – это измерение диаметра эритроцитов в фиксированном и окрашенном мазке крови с использованием окуляр – микрометра и объектив-микрометра. Измеряют диаметр 200-500 различных эритроцитов, результаты распределяют по группам в зависимости от величины диаметра и устанавливают в процентах (%) относительную численность каждой группы.

Читайте также:  Сколько делаются анализы крови на аллергены

Нормы: содержание нормоцитов (диаметр 6.9-8.0 мкм) составляет приблизительно 68%, микроцитов (диаметр менее 6.9 мкм) – 15%, макроцитов (диаметр более 8.0 мкм) – 17%.

Прямой микроскопический метод чрезвычайно трудоемок, отнимает много времени и поэтому уступает электронно-автоматическому методу.

Электронно-автоматический метод – это подсчет эритроцитов различного диаметра с помощью счетчиков «Культер» и «Целлоскоп».

Эритроцитометрическая кривая Прайс-Джонса в норме имеет правильную форму с вершиной на 7.2 мкм и довольно узким основанием в пределах 6-9 мкм.

Увеличение диаметра эритроцитов (макроцитоз) со сдвигом кривой Прайс – Джонса вправо наблюдается при мегалоцитарных анемиях (витамин-В12-фолиеводефицитные), при заболеваниях печени, при алкоголизме.

Уменьшение диаметра эритроцитов (микроцитоз) со сдвигом эритроцитометрической кривой влево встречается при наследственном микросфероцитозе, железодефицитной анемии, интоксикации свинцом.

Нормальные эритроциты имеют форму диска с вдавлением в центре. В патологических случаях могут появлять­ся эритроциты с измененной формой. Изменение формы эритроцитов называется пойкилоцитозом. Встречаются следующие формы эритроцитов.

Сфероциты — эритроциты, имеющие округлый или ша­рообразный вид, утратившие двояковогнутую форму. Микросфероциты имеют иногда обычные размеры. Сфероцитоз бывает наследственным и приобретенным. Наблю­дается при наследственном микросфероцитозе (болезнь Минковского-Шоффара), гемолитических анемиях, сеп­сисе, искусственных клапанах сердца.

Овалоциты (эллиптоциты) — эритроциты овальной фор­мы. Встречаются при талассемии, наследственном овалоцитозе, тяжелых железодефицитных анемиях, анемиях при лейкозах.

Мишеневидные эритроциты (таргентные клетки, лептоциты) — плоские, бледные, с центральным скоплением гемоглобина в виде мишеней. Бывают при талассемии, тя­желых железодефицитных анемиях, после спленэктомии, при различных видах желтух, алкоголизме.

Стоматоциты — центральное просветление у таких эритроцитов изогнуто, напоминает форму рта. Встречают­ся при наследственных стоматоцитозах (относятся к гемо­литическим анемиям), после переливания крови, при опу­холях и циррозе печени, остром алкогольном отравлении.

Акантоциты — эритроциты зазубренной формы, имею­щие выпячивания различной величины. Обнаруживают­ся при наследственных акантоцитозах, тяжелых заболе­ваниях печени (токсических гепатитах, циррозах), гипо­тиреозе, терапии гепарином, хроническом алкоголизме, после спленэктомии.

Эхиноциты — эритроциты с несколькими выростами, как бы покрытые шипами, колючками. Такие формы наб­людаются при тромбоцитопенической пурпуре, раке же­лудка, уремии. Если в мазке все эритроциты имеют такую форму, это говорит о неправильной фиксации мазка.

Каплевидные эритроциты имеют форму капель. Встре­чаются при миелофиброзе и токсических гепатитах.

Анулоциты — эритроциты в виде пустых колец. Наблю­даются в периферической крови при тяжелых формах железодефицитных анемий.

Серповидные эритроциты (дрепаноциты) имеют форму серпов, полулуний, овсяных зерен. Образуются в крови при серповидно-клеточной анемии.

В отличии от анизоцитоза, пойкилоцитоз является бо­лее поздним признаком анемии и отмечается при более тя­желом течении.

В норме зрелые эритроциты периферической крови не содержат никаких включений. И только в ретикулоцитах при суправитальной окраске красителем бриллианткрезилблау выявляется зернистосетчатая субстанция.

При различных патологических состояниях в перифе­рической крови обнаруживаются эритроциты с различны­ми включениями: базофильная пунктация — мелкая, си­него цвета, равномерно расположенная в цитоплазме зер­нистость, встречается при отравлении свинцом, ртутью и нередко при некоторых анемиях (мегалобластные, талассемия и др.); крапчатость Шуффнера — мелкая красного цвета зернистость, отмечается при трехдневной малярии; пятнистость Маурера — небольшие сиреневого или красно­го цвета пятнышки, встречаются при тропической маля­рии; тельца Гейнтца-Эрлиха — круглые резко очерченные включения по периферии эритроцита, появляются при отравлении гемолитическими ядами типа нитробензола, анилина, фенилгидразина, при лучевой болезни; тельца Жолли — круглые, сине-фиолетового цвета образования; кольца Кебота — нежные петельки красного цвета. Они имеют вид колечка, восьмерки или скрипичного ключа. Тельца Жолли представляют собой остатки ядерной суб­станции нормобластов, а кольца Кебота — остатки ядерной оболочки и встречаются главным образом при витамин-В12— и фолиеводефицитной анемии, тяжелых отравлениях гемолити­ческими ядами.

Помимо телец Жолли и колец Кебота при витамин-В12- и фолиеводефицитной анемии в периферической крови можно увидеть клеточные элементы мегалобластического типа кроветворения, который в норме отмечается только в эмб­риональном периоде.

При мегалобластическом кроветворении в кроветвор­ной ткани вместо эритробластов образуются мегалоблас­ты, которые способны к ранней гемоглобинизации при сохранившейся еще структуре ядра. По сродству к щелоч­ным или кислым красителям они подразделяются на базофильные, оксифильные и полихроматофильные. Большая их часть распадается в костном мозге, а меньшая — созре­вает до мегалоцитов, которые и поступают в перифериче­скую кровь. При резком обострении заболевания в пери­ферическую кровь попадают не только мегалоциты, но и мегалобласты. Мегалобласт представляет собой крупную клетку (диаметром более 15 мкм) с эксцентрично располо­женным круглым или овальным ядром. Мегалоциты — это безъядерные клетки размером от 12 до 15 мкм, значитель­но насыщенные гемоглобином. Поэтому цветной показа­тель, как правило, при В12— и фолиево-дефицитной ане­мии больше 1,0 (эту разновидность анемии относят к гиперхромным).

Оседание эритроцитов – это свойство клеток крови осаждаться (седементировать) за пределами кровеносного русла (на дне сосуда при сохранении крови в несвертывающемся состоянии), оставляя сверху слой плазмы. Этот феномен лежит в основе определения скорости оседания эритроцитов (СОЭ), которая выражается в миллиметрах плазмы, отстаивающейся в течение часа.

Наиболее распространен микрометод определения СОЭ в модификации Панченкова.

Принцип метода: при стоянии крови, стабилизиро­ванной цитратом натрия, эритроциты оседают с различ­ной скоростью в зависимости от физико-химических свойств крови. Скорость оседания эритроцитов (СОЭ) вы­ражается в мм/ч.

1) аппарат Панченкова, состоящий из штатива с капил­лярами шириной 1 мм, на стенке которых нанесены деле­ния от 0 (сверху) до 100 (снизу). На уровне 0 мм имеется бук­ва К (кровь), а на середине капилляра, около метки 50 мм — буква Р (реактив);

2) агглютационные (видалевские пробирки);

3) 5% свежеприготовленный раствор натрия цитрата;

Ход исследования. В капилляр Панченкова набирают 5% раствор натрия цитрата до метки «Р» — 50 мм и выду­вают его в видалевскую пробирку. Затем этим же капил­ляром, держа его горизонтально, из уколотого пальца на­бирают два раза кровь до метки «К» — 0 мм и выпускают ее в пробирку с натрия цитратом. Хорошо перемешивают. Этим же капилляром набирают цитратную кровь до мет­ки «К» и ставят строго вертикально в штатив. Получен­ное соотношение объемов крови и натрия цитрата равно 1:4. Через 1 ч отмечают по делениям на капилляре числомиллиметров освободившегося от эритроцитов столбика плазмы.

Интерпретация полученных данных. Нормальные показатели СОЭ:

Дети имеют более низкую СОЭ (1-8 мм/ч), чем взрослые, а лица среднего возраста меньше, чем старики.

Изменение СОЭ при патологии.

1. Значительное увеличение – опухолевые заболевания, диффузные болезни соединительной ткани, тяжелые инфекции, болезни почек, протекающие с нефротическим синдромом, выраженная витамин-В12-фолиеводефицитная анемия.

2. Умеренное увеличение – острые и хронические инфекционные заболевания, локализированные гнойные процессы, инфаркт миокарда, гипертиреоз, тяжелый сахарный диабет, внутренние кровотечения, интоксикации ртутью и мышьяком.

3. Снижение – эритремия, вторичные симптоматические эритроцитозы, ацидоз, тяжелая сердечная недостаточность.

4. Методика определения количества лейкоцитов.

Подсчет количества лейкоцитов крови может быть произведен в счетной камере Бюркера с сеткой Горяева или в электронно-автоматических анализаторах («Целлоскоп», «Культер», «Техникан»).

Методика подсчета в камере Бюркера с сеткой Горяева

Принцип метода: аналогичен таковому подсчету эритроцитов, суть его состоит в точном отмеривании кро­ви и ее разведении в определенном объеме жидкости с по­следующим подсчетом клеточных элементов в счетной ка­мере и пересчете полученного результата на 1 крови.

1) смесители или пробирки для подсчета лейкоцитов;

2) 3% раствор уксусной кислоты, к которому прибавлено несколько капель метилвиолета или метиленового синего;

Смеситель для лейкоцитов отличается от такового для эритроцитов тем, что имеет более широкий просвет капил­ляра и меньший по величине резервуар. На смеситель нане­сены три метки: 0,5, 1,0 и 11. Это позволяет развести кровь в 10 либо в 20 раз (чаще разводят в 20 раз).

Ход исследования: при взятии крови для подсчета лей­коцитов с кожи предварительно удаляют ватным тампо­ном остатки крови и, слегка сдавливая палец, выпускают свежую каплю крови. При работе со смесителями кровь набирают до метки 0,5, затем разводят 3 % раствором ук­сусной кислоты до метки 11. Энергично встряхивают в те­чение 3 мин, после чего сливают 1-2 капли и заполняют счетную камеру. При работе с пробирками для подсчета лейкоцитов наливают 0,4 мл 3% раствора уксусной кислоты и в нее выпускают 0,02 мл крови, отмеренной пипет­кой от гемометра Сали. Тщательно встряхивают пробир­ки, затем в жидкость опускают пипетку и, набрав содер­жимое, заполняют счетную камеру. Так как лейкоцитов гораздо меньше, чем эритроцитов, то для получения до­стоверного и точного результата подсчет производят в 100 больших (неразграфленных) квадратах. Обычно в одном большом квадрате находится 1-2 лейкоцита. Число лей­коцитов в 1 мкл крови рассчитывается аналогично расче­ту числа эритроцитов по формуле

где X — количество лейкоцитов в 1 мкл крови; А — количе­ство лейкоцитов, сосчитанных в 1600 малых квадратах; Б — количество сосчитанных малых квадратов (1600); 4000 — величина, умножая на которую, мы получаем ко­личество клеток в 1 мкл.

Интерпретация полученных данных. Нормальное количество лейкоцитов: 4.0 – 9.0 х 10 9 /л. Уменьшение их числа в кро­ви называется лейкопенией, увеличение — лейкоцитозом.

Лейкоцитоз может быть абсолютным (истинным) и от­носительным (перераспределительным).

Абсолютный лейкоцитоз – наблюдается при острых воспалительных процессах, некрозе тканей, острых бактериальных инфекциях (за исключением брюшного тифа, бруцеллеза, туляремии и др.), аллергических состояниях, злокачественных опухолях (с деструкцией тканей), закрытых травмах черепа и кровоизлияниях в мозг, диабетической и уремической коме, шоке, острой кровопотере, как первичная реакция – при лучевой болезни. Значительное повышение количество лейкоцитов встречается при лейкозах.

От­носительный (перераспределительный) лейкоцитоз является следствием поступления лейкоцитов в ток крови из органов, служащих для нее депо. Это происходит после приема пищи (пищевой лейкоцитоз), горячих и холодных ванн, сильных эмоций (вегетососудистый лейкоцитоз), интенсивной мышечной работы (миогенный лейкоцитоз) и т.д.

Лейкопения.Лейкопения рассматривается как показатель угнете­ния функциональной способности костного мозга в ре­зультате воздействия токсических веществ (мышьяк, бен­зол и т.п.), некоторых медикаментов (сульфаниламиды, левомицетин, бутадион, иммуран, циклофосфан и т.п.), вирусов (гриппа, вирусного гепатита, кори и т.п.), микро­бов (брюшного тифа, бруцеллеза и т.п.), ионизирующей радиации, рентгеновского излучения и гиперспленизма (увеличение функции селезенки).

Лейкоцитоз и лейкопения редко характеризуются пропорциональным увеличением (снижением) суммарного числа лейкоцитов всех видов (например лейкоцитоз при сгущении крови); в большинстве случаев имеется увеличение (уменьшение) числа какого-либо одного типа клеток, поэтому применяют термины «нейтрофилез», «нейтропения», «лимфоцитоз», «лимфопения», «эозинофилия», «эозинопения», «моноцитоз», «моноцитопения», «базофилия».

При клинической оценке изменения количества лейкоцитов большое значение придается процентному соотношению отдельных форм лейкоцитов, то есть лейкоцитарной формуле.

Лейкоцитарная формула крови здорового человека:

Относительное количество Абсолютное количество

Базофилы……………………….0-1% 0-0,0650 х 10 9 /л

Эозинофилы…………………….0.5-5% 0,02-0,30 х 10 9 /л

Нейтрофилы: — миелоциты…………0% отсутствуют

— палочкоядерные…. 1-6% 0,040-0,300 х 10 9 /л

— сегментоядерные….47-72% 2,0-5,5 х 10 9 /л

Лимфоциты……………………….19-37% 1,2-3,0 х 10 9 /л

Моноциты………………………….3-11% 0,09-0,6 х 10 9 /л

Подсчет лейкоцитарной формулы производят в окрашенных мазках периферической крови. Для правильной интерпрепатации результатов исследования лейкоцитарной формулы рекомендуется производить подсчет в абсолютных количествах, а не в относительных. Наиболее распространены методы окраски мазков по Романовскому-Гимзе, по Паппенгейму. Под иммерсией считают не менее 200 клеток, а затем выводят процентное соотношение отдельных видов лейкоцитов. Анализ лейкограммы с учетом других показателей крови и клинической картины является ценным методом обследования, помогает в постановке диагноза и определении прогноза заболевания.

Основные причины нейтрофилеза.

1. Острые бактериальные инфекции – локализированные и генерализованные.

2. Воспаление или некроз ткани.

3. Миелопролиферативные заболевания.

5. Лекарственные воздействия (кортикостероиды).

Основные причины нейтропении.

1. Инфекции – бактериальные (брюшной тиф, бруцеллез, туляремия, паратифы) и вирусные (инфекционный гепатит, корь, грипп, краснуха и другие).

2. Миелотоксические влияния и супрессия гранулоцитопоэза (ионизирующая радиация; химические агенты – бензол, анилин, ДДТ; лекарственные воздействия – цитостатики и иммунодепрессанты; витамин-В12-фолиеводефицитная анемия, острый алейкемический лейкоз, апластическая анемия).

3. Воздействие антител (иммунные формы) – гиперчувтвительность к медикаментам, аутоиммунные заболевания (СКВ, ревматоидный артрит, хронический лимфолейкоз), изоиммунные проявления (гемолитическая болезнь новорожденных).

4. Перераспределение и депонирование в органах – шоковые состояния, заболевания со спленомегалией и гиперспленизмом.

5. Наследственные формы (семейная доброкачественная хроническая нейтропения).

Основные причины эозинофилии.

1. Аллергические заболевания.

2. Паразитарные инвазии (трихинеллез).

3. Хронические поражения кожи — псориаз, пузырчатка, экзема.

4. Опухоли (эозинофильные варианты лейкоза).

5. Другие заболевания – фибропластический эндокардит Леффлера, скарлатина.

6. В фазе выздоровления при инфекциях и воспалительных заболеваниях (благоприятный прогностический признак).

Причины эозинопении (анэозинофилии).

1. Повышенная адренокортикостероидная активность в организме.

Основные причины базофилии:

1. Хронический миелолейкоз и эритремия.

Основные причины моноцитоза.

1. Подострые и хронические бактериальные инфекции.

2. Паразитарные инфекции – лейшманиоз, малярия.

3. Гемобластозы – моноцитарный лейкоз, лимфогранулематоз, лимфомы.

4. Другие состояния – СКВ, саркоидоз, ревматоидный артрит, инфекционный моноцитоз; в период выздоровления от инфекций, при выходе из агранулоцитоза, после спленэктомии.

Читайте также:  Расшифровать анализ крови на анемию

Снижение числа моноцитов имеет значение главным образом при оценке лимфоцитарно-моноцитарного соотношения при легочном туберкулезе.

Основные причины лифоцитоза.

1. Инфекции – острые вирусные (инфекционный мононуклеоз, корь, краснуха, ветряная оспа), хронические бактериальные (туберкулез, сифилис, бруцеллез), протозойные (токсоплазмоз).

2. Гемобластозы (лимфолейкоз, лимфомы).

3. Другие заболевания — гипертиреоз, аддисонова болезнь, витамин-В12-фолиево-дефицитная анемия, гипо- и апластические анемии.

Лимфоцитопениянаблюдается при СКВ, лимфогранулематозе, распространенном туберкулезе лимфоузлов, в терминальной стадии почечной недостаточности, острой лучевой болезни, иммунодефицитных состояниях, приеме глюкокортикоидов.

Увеличение или уменьшение числа отдельных видов лейкоцитов в крови может быть относительным или абсолютным. Если изменяется только процентное содержание того или иного вида лейкоцитов, то имеет место относительная нейтрофилия, относительная эозинопения и т.д. Увеличение или уменьшение абсолютного содержания какого-либо вида лейкоцитов, то есть количества данных клеток в единице объема крови, называют абсолютной нейтрофилией, абсолютной эозинопенией и т.д.

Сдвиг формулы влево (увеличение количества молодых форм нейтрофилов) – признак воспаления или некротического процесса в организме.

Сдвиг лейкоцитарной формулы вправо характерен для лучевой болезни и витамин-В12-фолиеводефицитной анемии.

Отсутствие или значительное снижение числа всех видов зернистых лейкоцитов – гранулоцитов (нейтрофилов, эозинофилов, базофилов) обозначают термином агранулоцитоз. В зависимости от механизма возникновения различают миелотоксический (воздействие ионизирующего излучения, прием цитостатиков) и иммунный (гаптеновый и аутоиммунный агранулоцитоз).

5. Методика определения количество тромбоцитов. Диагностическая трактовка.

Существуют следующие методы определения количества тромбоцитов в единице объема крови:

2) подсчет в камере Бюркера с сеткой Горяева;

3) использование фазоконтрастной и люминисцентной микроскопии;

4) электронно-автоматический метод (счетчики «Культер», «Целлоскоп»).

Для подсчета тромбоцитов периферической крови ча­ще всего применяют методику Фонио.

1) 14% раствор магния сульфата.

Ход исследования: для предупреждения склеивания тромбоцитов предварительно на место укола пальца нано­сят каплю 0,14 % раствора магния сульфата и через нее де­лают прокол. Выступившую каплю крови смешивают с каплей магния сульфата и делают мазок, который окра­шивают по Романовскому—Гимзе. Затем в мазке под мик­роскопом с иммерсионной системой одновременно подсчи­тывают 1000 эритроцитов и находящиеся среди них тром­боциты. Последние встречаются в препарате либо в оди­ночку, либо чаще разбросаны кучками между эритроцита­ми. По величине тромбоцит занимает приблизительно 1/3-1/4 эритроцита. Тромбоциты не имеют ядра и их ци­топлазма окрашена в синеватый цвет с красноватым от­тенком в центре. Зная содержание эритроцитов в 1 л кро­ви, легко вычисляют абсолютное количество тромбоцитов.

Нормальное количество тромбоцитов в периферической крови: 180.0 – 320.0 х 10 9 /л. (150-450 х 10 9 /л согласно рекомендациям ВОЗ).

Интерпретация полученных данных.

Причины увеличения числа тромбоцитов (тромбоцитоза).

1. Миелопролиферативные заболевания — хронический миелолейкоз, эритремия, эссенциальная тромбоцитемия.

2. Воспалительные процессы – острая ревматическая лихорадк

Папиллярные узоры пальцев рук — маркер спортивных способностей: дерматоглифические признаки формируются на 3-5 месяце беременности, не изменяются в течение жизни.

Организация стока поверхностных вод: Наибольшее количество влаги на земном шаре испаряется с поверхности морей и океанов (88‰).

Механическое удерживание земляных масс: Механическое удерживание земляных масс на склоне обеспечивают контрфорсными сооружениями различных конструкций.

источник

Показания: обследование по назначению врача.

Оснащение: стерильный лоток, накрытый стерильной бязевой салфеткой,

стерильные шарики, стерильный пинцет, стерильные шприцы и игла, 70 о спирт, жгут, клеенчатый валик, салфетка (подложить под жгут, стерильные перчатки, маска, чистые пробирки (для бак. обследования крови и на ВИЧ — стерильные), штатив для пробирок, направления, стеклограф, ёмкости с дез. растворами, стерильный халат, резиновые пробочки для пробирок.

Перед забором крови проверить укомплектованность «Аварийной аптечки»!

1. Подготовка к манипуляции.

1.Приготовить все необходимое для проведения процедуры (заполнить направление, пронумеровать пробирку, сделать запись в журнале).

Эффективность проведения манипуляции.

2. Установить доброжелательное отношение с пациентом.

Гуманное отношение к па­циенту (ст.3.Этического кодекса м/с). Соблюдение прав пациента.

3. Объяснить пациенту цель и ход исследования и получить его согласие.

Гуманное отношение к па­циенту (ст.3.Этического кодекса м/с). Соблюдение прав пациента

4. При необходимости проинструктировать пациента о ходе манипуляции или обеспечить пациента памяткой по подготовке к процедуре.

Эффективность проведения манипуляции.

5. Помочь пациенту принять удобное положение для проведения венепункции.

Эффективность проведения манипуляции.

6. Обработать руки гигиеническим способом, надеть спец. одежду и стерильные перчатки.

Эффективность проведения манипуляции. Инфекционная безопасность.

7. Подготовить шприц с иглой для забора крови

1. Освободить место для инъекции (место локтевой вены).

Правильность выполнения манипуляции.

2. Под локоть пациента подложить клеёнчатый валик.

Правильность выполнения манипуляции.

3. Наложить жгут на плечо пациента на 5 см выше локте­вого сгиба, покрытое салфеткой (или его одеждой).

Примечание: при наложении жгута пульс на лучевой артерии не должен изменяться. Кожные покровы ниже места наложения жгута багровеют, вена набухает. При ухудшении наполнения пульса жгут необходимо ослабить.

4. Попросить пациента поработать кулачком

Контроль правильности наложения жгута. Для лучшего наполнения вены.

5. Обработать перчатки шариками со спиртом.

6. Обработать место инъекции шариком со спиртом от периферии к центру (снизу-вверх), диаметром 10х10 см.

7. Взять шприц с иглой в правую руку так, чтобы указательный палец фиксировал иглу сверху.

8.Обработать место инъекции шариком со спиртом, попросить пациента зажать кулачок.

9. Зафиксировать вену большим пальцем левой руки, про­колоть кожу (игла срезом вверх) и войти в вену на 1/3 длины иглы.

Эффективность выполне­ния процедуры.

10. Оттянуть поршень на себя, убедиться в появлении крови в шприце.

Контроль попадания в вену.

11. Продолжать тянуть поршень на себя, набирая нужное количество крови, не снимая жгута.

Эффективность выполне­ния процедуры.

12. Левой рукой развязать жгут, прежде чем извлечь иглу и попросить пациента разжать кулачок.

13. Приложив шарик со спиртом к месту инъекции, извлечь иглу, попросить пациента согнуть руку в локте и подержать ватку со спиртом 5-7 минут (затем этот шарик поместить в дез.раствор).

14. Выпустить медленно кровь по стенке пробирки, находящейся в штативе. Закрыть пробирку пробкой.

Достоверность результатов анализа. Профилактика осложнений.

15. Шприцы, иглы поместить в емкости для дезинфекции, с заполнением всех каналов.

16. Жгут, валик дезинфицировать после каждого пациента.

17. Направление поместить в целлофановый пакет.

18. Штатив с пробиркой поместить в контейнер, закрыть крышкой и вместе с направлением отправить в лабораторию.

19. Снять перчатки, погрузить их в дез. раствор.

20. Провести гигиеническую антисептику рук.

Предупреждение химического воздействия талька на кожу рук.

17. Сделать запись о выполнении процедуры в медицинскую документацию.

Контроль кол-ва выполненных процедур, преемственность в работе медсестры.

Осложнения при заборе крови из вены на анализ.

1. Невозможность пункции вены (анатомические особенности, флебиты и др.).

4. Тромбирование иглы (кровь брать иглами большого размера).

Взятие крови из вены на ВИЧ-исследование.

1. Работайте осторожно, чтобы исключить ранения иглой, пробиркой. Категорически запрещается использовать пробирки с отбитыми краями. Используйте средства личной защиты: маску, резиновые перчатки, защитный экран, полиэтиленовый фартук. Все повреждения кожи на руках перед надеванием резиновых перчаток накройте лейкопластырем или напальчником. В процедурном кабинете обязательно должна быть полностью укомплектована «Аварийная аптечка» для профилактики гемоконтактных инфекций.

2. Пробирку с кровью пронумеруйте. Номер на пробирке и направлении должен совпадать.

3. В асептических условиях по общепринятым правилам из вены пациента возьмите 5 мл крови и вылейте в сухую центрифужную пробирку с делениями.

4. Закройте пробирку резиновой пробкой.

5. Кровь в холодильнике может храниться не более суток. Не подлежит доставке в лабораторию гемолизированная кровь.

6. Пробирки в лабораторию доставьте в контейнере с уплотнителем. На дно контейнера положите в несколько слоев полотняную салфетку.

7. Отдельно доставьте направление, где указаны данные о лицах, у которых взята кровь.

Примечание: При взятии крови на BИЧ-инфекцию в направлении не указываются паспортные данные пациента, а проставляется соответствующий шифр.

Образец этикетки – направление биоматериала для лабораторное исследование Название лаборатории (клиническая, биохимическая, бактериологическая, цитологическая и др.). Название биоматериала и вида анализа. Фамилия, имя и отчество пациента. Возраст. Пол. Лечебное учреждение, отделение или домашний адрес (для aмбулаторных пациентов). Диагноз. Фамилия врача. Фамилия медсестры. Дата.

Взятие крови из вены на биохимическое исследование.

Кровь на биохимическое исследование берет процедурная медсестра.

3. Одноразовый шприц 10 мл..

4. Берется 5-6 мл крови одноразовым шприцем, выпускается мед­ленно в пробирку по стенке, чтобы не разрушались форменные элементы крови.

5. Медсестра оформляет направление в биохимическую лабораторию.

Взятие крови из вены системой вакуумного забора крови VACUPLUS .

Система VacuPlus обеспечивает:

 Максимальную безопасность медицинского персонала во время процедуры взятия крови — конструкция систем VacuPlus полностью исключает контакт крови пациента с окружающей средой.

 Быстроту взятия крови (5 -10 секунд).

 Возможность набрать кровь в две и более пробирки за очень короткий промежуток времени и без повторного введения иглы в вену.

 Максимально точное соблюдение соотношения кровь-антикоагулянт.

 Простоту и надежность маркировки и транспортировки образцов

 Возможность использования пробирки без открывания крышки при работе с некоторыми автоматическими анализаторами. А также система обеспечивает максимально точное соблюдение правил преаналитического этапа лабораторных исследований, существенно сокращая возможность выдачи ошибочного результата. Разнообразие компонентов системы позволит вам удобно и безопасно взять кровь для любых видов лабораторного анализа. VacuPlus — полностью закрытая вакуумная система для взятия крови из вены. Система VacuPlus аналогична обычному шприцу, но вместо поршня используется перепад давления, возникающий благодаря тому, что в пробирке создан вакуум. Система максимально удобна в обращении и обеспечивает защиту медицинского персонала от возможного заражения при работе с инфицированной кровью. Система VacuPlus состоит из трех компонентов: 1. Специальная игла; 2. Иглодержатель; 3. Вакуумная пробирка VacuPlus с крышкой.

Процедура взятия крови с помощью вакуумных систем VACUPLUS®

1. Взять иглу VacuPlus® и снять защитный колпачок со стороны, закрытой резиновой мембраной

2. Вставить иглу в держатель и завинтить до упора. Подготовить все необходимые пробирки.

3. Снять защитный колпачок со второй стороны иглы, вставить выбранную пробирку крышкой в держатель

Не прокалывая резиновую заглушку в крышке пробирки, ввести систему держатель-игла в вену пациента, как это делается при обычной процедуре взятия крови шприцем.

В этот момент кровь не проходит по игле, так как второй ее конец закрыт резиновой мембраной 4. Вставить пробирку в держатель до упора. При этом игла прокалывает резиновую мембрану и резиновую пробку в крышке пробирки — образуется канал между пробиркой с вакуумом и полостью вены. Кровь проходит в пробирку до тех пор, пока не компенсируется созданный в пробирке вакуум (если кровь не идет — это значит, что игла прошла вену насквозь — в этом случае нужно немного вытянуть иглу (но не вынимать!), пока кровь не пойдет в пробирку).

Если используете жгут — снимите его, как только кровь начнет поступать в пробирку. 5. После прекращения тока крови извлечь пробирку из держателя.

Резиновая мембрана возвращается в исходное положение, перекрывая ток крови по игле. При необходимости в держатель вставляется ряд других пробирок для получения нужного объема крови для различных исследований. Повторно вводить иглу для этого не нужно. 6. При использовании пробирок с добавками необходимо аккуратно перевернуть пробирку 8-10 раз для полного смешения крови с реагентами или активатором образования сгустка. После того как последняя пробирка заполнилась, вынуть держатель с иглой из вены. 7. Для полной безопасности рекомендуется аккуратно снять иглу с держателя, используя специальный контейнер VacuPlus®.

Процедура взятия крови с помощью вакуумных систем S-Monovette®.

Закрытые системы взятия венозной крови S-Monovette® представляют собой новое поколение вакуумных шприцев контейнеров с реактивами. Их использование имеет следующие преимущества перед традиционными способами:

Полностью исключается контакт медперсонала с кровью на всех этапах взятия крови и ее транспортировки.

Изготовленные из особо прочного пластика, S-Monovette® позволяют осуществить безопасную доставку крови на любые расстояния.

Благодаря наличию широкого спектра S-Monovette® с заранее добавленными реагентами для различных видов анализов (ЭДТА для гематологии, цитрат натрия для коагулогии, активатор свертывания для получения сыворотки), значительно облегчается работа медсестер и лаборатории. Международная цветовая маркировка S-Monovette® предотвращает их не правильное применение.

Уменьшается количество ошибочных анализов, связанных с неправильным взятием проб крови и неверным соотношением реагентов.

В зависимости от состояния вен пациента, можно применять как вакуумный, так и шприцевой метод взятия крови.

В отличие от обычных вакуумных систем, вакуум в S-Monovette® создается непосредственно перед взятием крови.

Закручивающаяся крышка предотвращает «аэрозольный эффект» при открывании.

источник